Respon Eksplan Vanili (Vanilla planifolia) dengan Stimulasi BAP dan NAA Melalui Teknik Mikropropagasi
DOI:
10.25047/agriprima.v4i2.362Published:
Sep 30, 2020Issue:
Vol. 4 No. 2 (2020): SEPTEMBERKeywords:
BAP, eksplan, NAA, mikropropagasi, vaniliArticles
Downloads
How to Cite
Downloads
Metrics
Abstract
Pengembangan tanaman vanili dengan perbanyakan vegetatif secara konvensional memiliki keterbatasan tanaman induk sebagai bahan setek sehingga vanili berpotensi dikembangkan melalui teknik mikropropagasi. Kemampuan eksplan vanili dalam beregenerasi dan berdiferensiasi untuk membentuk tunas dan akar secara in vitro perlu dikontrol melalui pengaturan auksin dan sitokinin. Tujuan dalam penelitian adalah: 1) menganalisis respon eksplan vanili dengan stimulasi BAP; 2) menganalisis respon eksplan vanili dengan stimulasi NAA dan 3) menganalisis interaksi stimulasi BAP dan NAA terhadap respon eksplan vanili melalui teknik mikropropagasi. Penelitian dilaksanakan di laboratorium Kultur Jaringan Politeknik Negeri Jember menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial. Faktor 1 adalah stimulasi BAP pada level konsentrasi 0.0, 1.0, 3.0 mg/L dan faktor 2 adalah stimulasi NAA pada level konsentrasi 0.0, 0.5 mg/L. Hasil penelitian memperlihatkan bahwa stimulasi BAP secara tunggal mempengaruhi multiplikasi tunas vanili dengan rerata jumlah tunas terbanyak 6.8 tunas/ eksplan pada stimulasi BAP 1 mg/L dan stimulasi NAA secara tunggal menginduksi pembentukan akar dengan rerata jumlah akar terbanyak 3.0 akar/eksplan pada stimulasi NAA 0.5 mg/L.
References
Abebe, Z., Mengesha, A., Teressa, A., & Tefera, W. (2009). Efficient in vitro multiplication protocol for Vanilla planifolia using nodal explants in Ethiopia. African Journal of Biotechnology, 8(24).
Ayele, Y. B., Tefera, W., & Bantte, K. (2017). Enhanced Protocol Development for in vitro Multiplication and Rooting of Vanilla (Vanilla planifolia Andr.) Clone (Van. 2/05). Biotechnology Journal International, 1–11.
Erawati, D. N., Wardati, I., Humaida, S., & Fisdiana, U. (2020). Micropropagation of Vanilla (Vanilla planifolia Andrews) with Modification of Cytokinins. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 411(1), 12009.
Jadid, N., Nurhidayati, T., & Priyono, P. (2015). In Vitro Clonal Propagation of Vanilla planifolia Andrews Using Microshoot-derived Node Explants. J. Appl. Environ. Biol. Sci., 5(6), 105–110.
Lee-Espinosa, H. E., Murgu’ia-González, J., Garc’ia-Rosas, B., Córdova-Contreras, A. L., Laguna-Cerda, A., Mijangos-Cortés, J. O., … Santana-Buzzy, N. (2008). In vitro clonal propagation of vanilla (Vanilla planifolia ‘Andrews’). HortScience, 43(2), 454–458.
Lestari, E. G. (2011). Peranan zat pengatur tumbuh dalam perbanyakan tanaman melalui kultur jaringan. Jurnal AgroBiogen, 7(1), 63–68.
Loedji, H. (2019). 8 Besar Produk Pertanian Indonesia. PortoNews.
Njoroge, A. M., Gitonga, L., Mutuma, E., Mimano, L., Macharia, C., Wasilwa, L., … Mungai, A. (2005). Propagation of high quality planting materials of Vanilla (Vanilla planifolia) through tissue culture. Kenya Agricultural Research Institute (KARI), Thika National Agricultural Research Laboratories Nairobi-Kenya, 1–4.
Palama, T. L., Menard, P., Fock, I., Choi, Y. H., Bourdon, E., Govinden-Soulange, J., … Kodja, H. (2010). Shoot differentiation from protocorm callus cultures of Vanilla planifolia (Orchidaceae): proteomic and metabolic responses at early stage. BMC Plant Biology, 10(1), 82.
Pinaria, A. G., Liew, E. C. Y., & Burgess, L. W. (2010). Fusarium species associated with vanilla stem rot in Indonesia. Australasian Plant Pathology, 39(2), 176–183.
Renuga, G., & Saravana-Kumar, S. N. (2014). Induction of vanillin related compounds from nodal explants of Vanilla planifolia using BAP and Kinetin. Asian J. Plant Sci. Res, 4(1), 53–61.
Restiani, R., Semiarti, E., & Indrianto, A. (2016). Konservasi anggrek hitam (Coelogyne pandurata Lindl.) melalui mikropropagasi pada berbagai medium kultur. Prosiding Simposium Nasional Pendidikan Biologi (Symbion 2016), 27, 393–404.
Tan, B. C., Chin, C. F., & Alderson, P. (2011). Optimisation of plantlet regeneration from leaf and nodal derived callus of Vanilla planifolia Andrews. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 105(3), 457–463.
Author Biographies
Dyah Nuning Erawati, Politeknik Negeri Jember
Usken Fisdiana, Politeknik Negeri Jember
Muhammad Kadafi, Politeknik Negeri Jember
License
Copyright (c) 2020 Dyah Nuning Erawati, Usken Fisdiana, Muhammad Kadafi
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
You are free to:
- Share — copy and redistribute the material in any medium or format.
- Adapt — remix, transform, and build upon the material for any purpose, even commercially.
Under the following terms:
- Attribution — You must give appropriate credit, provide a link to the license, and indicate if changes were made. You may do so in any reasonable manner, but not in any way that suggests the licensor endorses you or your use.
- ShareAlike — If you remix, transform, or build upon the material, you must distribute your contributions under the same license as the original.
- No additional restrictions — You may not apply legal terms or technological measures that legally restrict others from doing anything the license permits.
